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Profil Phytochimique Des Plantes Médicinales Utilisées Pour Le Soin de l'Asthme dans le Secteur Kipuku en République Démocratique du Congo (RDC)
Abstract
Cette étude analyse le profil phytochimique des espèces végétales exploitées dans la pharmacopée traditionnelle pour le traitement de l’asthme dans le secteur Kipuku en RDC. Des tests qualitatifs et des dosages quantitatifs ont été menés sur des extraits aqueux et organiques de 36 espèces végétales identifiées afin d'évaluer la diversité de leurs métabolites secondaires.
L'analyse qualitative révèle la présence de métabolites secondaires dont les polyphénols (100 %), les alcaloïdes (94,4 %), les stéroïdes (80,5 %), les tanins (75 %) et les saponines (68,8 %), tandis que les quinones libres et les leucoanthocyanes apparaissent plus rarement dans les espèces étudiées. Les familles des Euphorbiaceae, Fabaceae, Apocynaceae et Clusiaceae se distinguent par leur diversité métabolique. Les espèces Euphorbia hirta, Vernonia amygdalina, Carica papaya et Manniophyton fulvum présentent un pourcentage global élevé de tests phytochimiques positifs (90,9 %) des groupes phytochimiques recherchés.
Sur le plan quantitatif, une forte variabilité interspécifique est observée. Les concentrations en polyphénols sont plus élevées chez Crossopteryx febrifuga (38,4 mg EqAG/g) et Garcinia huilensis (35,1 mg EqAG/g). Les tanins abondent chez Manotes expensa (75 mg EqAG/g) et Psorospermum febrifugum (56,8 mg EqAG/g) tandis que les alcaloïdes présentent des valeurs les plus élevées dans les racines de Garcinia huilensis (75,4 mg EqAG/g). En revanche, les anthocyanes et les flavonoïdes restent présents en faibles teneurs.
Avec un taux moyen de positivité de 64,5%, cette étude confirme la diversité phytochimique des plantes étudiées. Ces résultats justifieraient l’usage traditionnel de ces espèces contre l’asthme et ouvrent la voie à de futures investigations pharmacologiques.
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.Battu, V., & Saint-Paul, A. (2014). L’asthme : maladie et diagnostic. Actualités
Pharmaceutiques, 53 (537), 1- 4.
.Global Initiative for Asthma. (2019). Prévention et traitement de l'asthme pour les adultes
et les enfants de 5 ans et plus. Guide de poche à l'intention des professionnels de santé. Disponible sur https://ginasthma.org/wp-content/uploads/2019/09/GINA-2019-main-Pocket-GuideFrench-wms.pdf , consulté le 15/01/2026.
.OMS (2023). Rapport mondial sur l’asthme, Genève, Suisse, Disponible sur https://www.who.int/publications/i/item/, consulté le 17/01/2026.
. Muke Lubaki Patrick, Mputu Bakamba Jean-Baptiste, Ndombe Rombeau, Nsielolo Kitoko Ruffin et Mutambel’hity Schie’nkung’ Déogratias (2026), Étude ethnobotanique des plantes utilisées dans le traitement traditionnel de l’asthme à Kipuku, République Démocratique Du Congo, International Journal of Progressive Sciences and Technologies,55 (2), 363-377.
. Mutombo, C. S., Bakari, S. A., Ntabaza, V. N., Nachtergael, A., Lumbu, J.-B. S., Duez, P., & Kahumba, J. B. (2022). Perceptions and use of traditional African medicine in Lubumbashi, Haut-Katanga province (DR Congo): A cross-sectional study. PLoS ONE 17(10): e0276325. https://doi.org/10.1371/journal. pone.0276325 consulté le 23/01/2026.
Kayonga, D.V. & Kambale, M.B. (2020). Ethnobotanique et savoirs traditionnels en voie de disparition en République Démocratique du Congo : cas du Nord-Kivu. Revue Congolaise des Sciences, Vol.3 (2), 45-58.
.Henri Puig, Daniel Barthélémy & Daniel Sabatier. (2003). Clé d’identification des principales familles et des principaux genres à espèces arborées de Guyane, Rev. For. Fr. LV - numéro spécial, 84 -100.
. Martin Yoane, 2024, Critères de détermination des espèces végétales : guide pratique d’identification, Paris, Biobotanica, 190 p.
. The Angiosperm Phylogeny Group. (2016). An update of the Angiosperm Phylogny Group classification for the orders and families of flowering plants : APG IV. Botanical Journal of the Linnean Society 181(1), 1-20. Disponible sur https://doi.org/10.1111/boj.12385
.Ruffin Nsielolo Kitoko, Jean Lejoly, Beaufils Futabaku Muniputu, Elie Ikomba Ndonda, Théophane Munkeralengi Kitoko, et Henri Paul Eloma Ikoleki. (2024). Inventaire floristique des trois îlots forestiers naturels dans la chefferie Pelende Nord, Province du Kwango en République Démocratique du Congo (RDC), International Journal of Innovation and Applied Studies, Vol. 42 No. 4, 572-584.
.Belesi, K. (2009). Etude floristique, phytogéographique et phytosociologique de la végétation du Bas-Kasai en République Démocratique du Congo .Thèse Doc., Fac de Sciences, Université de Kinshasa, 565p.
. Paul Latham & Konda Ku Mbuta. (2006). Quelques plantes utiles de la province du Bas-Congo, République Démocratique du Congo, 2e édition, Bruxelles, Jardin botanique national de Belgique, 320 p.
. Konda K.M., Bavukinina N., Latham P., Mbembe B., Konda K.R., Dumu L., Mafuta M., Kelela B., Itufa Y., & Kodondi K.K. (2015). Plantes médicinales de la R.D. Congo – Données Préliminaires, I.R.S.S. 436 p
. Ndombe T.R. (2020). Etude des plantes médicinales antidiabètiques du savoir endogène du peuple Wongo en secteur Kipuku, Territoire d’Idiofa Province du Kwilu/RDCongo Mémoire DEA, Université Pédagogique Nationale, Fac Sc. Dpt. de Biologie, Kinshasa, 124p.
.Békro Y.A ,Janat a, békro M , Boua B. B , trabi F.H and Éhilé E. (2007) Etude ethnobotanique et screening phytochimique de Caesalpinia benthamiana (baill.) herend et zarucchi. Sciences & nature. vol 4 n° 2: 217 – 225
. Béné K., Camara D., Fofié N’G.B.Y. et Zirihi G.N. (2015), Étude ethnobotanique, activité antifongique in vitro sur Candida albicans et toxicité sur les cellules HFF de Harrisonia abyssinica Oliv. (Simaroubaceae), une plante de la pharmacopée ivoirienne. Journal of Applied Biosciences 94 : 8815-8824.
.Ngoyi Matshimba Etienne, Tshilanda Dinangayi Dorrothée, Umba Phoba Divine, Kasiama Nkal Giresse, Kabengele Nkongolo Carlos, Bete Mvita Juvenal, Tshibangu S.T. Damien, Koto-Te-Nyiwa Ngbolua Jean-Paul, Mpiana Tshimankinda Pius. (2024). Profil phytochimique et activité antioxydante, antibactérienne, antiinflammatoire et antidrépanocytaire de Vigna radiata (L.) R. wilszek cultivé en RD Congo, Revue Congolaise des Sciences & Technologies, Vol. 03, N03, 355-363
.Giresse N. Kasiama, Adam Ikey, Carlos N. Kabengele, Jason T. Kilembe, Etienne N. Matshimba, Juvenal M. Bete, Prudent B. Bahati, Clément L. Inkoto, Paulin K. Mutwale, K. N. Ngbolua, Damien S. T. Tshibangu, Dorothée D. Tshilanda and Pius T. Mpian. (2022). Anthelmintic and Antioxidant Activities, Phytochemical Profile and Microscopic
Features of Senna alata Collected in the Democratic Republic of Congo, Annual Research & Review in Biology, 37(6): 28-36,
.Ngombe, N. K., Kabangu, O. K., Memba, T. B., Mukaba, N. L., Ngombe, A. L., & Shongo, M. L. (2016). Phytochemical Screening of some medicinal plants traditionally used by African Women in Kinshasa city (DR Congo) for their intimate hygiene and Evaluation of the pH of derived recipes. International Journal of Pharmaceutics and Drug Analysis, 4(5), 237-241.
.Hariri, M., Salle, G. et Andary, C. (1991). Étude phytochimique du flavis (Marrubium vulgare L., Lamiaceae). Journal de Pharmacie de Belgique, vol. 46, n° 6, 367-372.
.Dohou, N., Yamni, K., Tahrouch, S., Idrissi Hassani, L. M., Badoc, A., & Gmira, N. (2003). Criblage phytochimique d'une endémique ibéro-marocaine, Thymelaea lythroides. Bulletin de la Société de Pharmacie de Bordeaux, 142, 61-78.
.Price, M. L., Van Scoyoc, S., & Butler, L. G. (1978). A critical evaluation of the vanillin reaction as an assay for tannin in sorghum grain. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 26(5), 1214-1218.
.Lebreton, P., Jay, M., & Voirin, B. (1967). Sur l'analyse qualitative et quantitative des flavonoïdes dans les tissus végétaux. Chimie Analytique, 49(7), 375-383.
.Barnes, P. J. (2011). Pathophysiology of allergic inflammation. Immunological Reviews, 242 (2), 31–50.
.Barnes, P. J. (2017). Cellular and molecular mechanisms of asthma and COPD. Clinical Science, 131(13), 1541–1558.
.Rahman, I. (2006). Oxidative stress and inflammation in asthma. Current Drug Targets, 7(5), 491–503.
.Li, J., Zhang, Y., Li, G., & Wang, J. (2019). Polyphenols and asthma: A review. Journal of Functional Foods, 53 (3), 159–168.
.Rogerio, A. P., Dora, C. L., Andrade, E. L., Chaves, J. S., Silva, L. F. C., Lemos-Senna, E., & Calixto, J. B. (2010). Anti-inflammatory effect of quercetin-loaded microemulsion in the airways allergic inflammatory model. Pharmacological Research, 61(4), 288–297.
.Tanaka, T., Takahashi, R., & Ohsawa, K. (2014). Flavonoids and asthma. Nutrients, 6(6), 2170–2201.
. Ekpo, O. E., & Pretorius, E. (2007). Asthma, plants and phytomedicines: Journal of Ethnopharmacology, 109(3), 489–499.
. Kumar, S., Malhotra, R., & Kumar, D. (2010). Euphorbia hirta: Its chemistry, traditional and medicinal uses. Pharmacognosy Reviews, 4(7), 58–61.
. Haslam, E. (1996). Natural polyphenols (vegetable tannins) as drugs. Journal of Natural Products, 59(2), 205–215.
.Chung, K. F., Barnes, P. J., & Adcock, I. M. (2013). Molecular mechanisms of asthma. The Lancet, 382(9901), 1360–1372.
. Hostettmann, K., & Marston, A. (2005). Saponins. Cambridge University Press.
.Andersen, Ø. M., & Jordheim, M. (2010). The anthocyanins. In Ø. M. Andersen & K. R. Markham (Eds.), Flavonoids: Chemistry, Biochemistry and Applications. CRC Press.
. Sarker, S. D., Latif, Z., & Gray, A. I. (2006). Natural Products Isolation. Humana Press.
.Gobbo-Neto, L., & Lopes, N. P. (2007). Plant secondary metabolites: Ecological functions and their manipulation in the laboratory. Química Nova, 30(2), 374 - 381.
. Akinjogunla, O. J., Egharevba, H. O., & Ganiu, O. T. (2019). Phytochemical screening, proximate analysis and in-vitro antimicrobial activities of Vernonia amygdalina Del. (Asteraceae) leaves. Journal of Medicinal Plants for Economic Development, 3(1), a62. https://doi.org/10.4102/jomped.v3i1.62
DOI: http://dx.doi.org/10.52155/ijpsat.v57.1.8093
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